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禽流.感病毒（通用型）檢測試劑盒（PCR法）
【產品名稱】
通用名稱：禽流.感病毒（通用型）檢測試劑盒（實時熒光PCR法）
英文名稱：Avian Influenza virus Detection Kit (Real-Time PCR Method)
【包裝規格】 25頭份/盒 & 50頭份/盒
【預期用途】
禽流.感病毒（通用型）檢測試劑盒（PCR法）適用于禽流.感病毒檢測，不進行病毒分型，可用于臨床禽.流感病毒感染的輔助診斷，但不作確診使用。
【檢驗原理】
禽流.感病毒（通用型）檢測試劑盒（PCR法）針對禽流.感病毒基因組高度保守區域設計特異性引物和探針，在反應體系中含禽.流感病毒基因組模板的情況下，PCR反應得以進行并釋放熒光信號。利用熒光定量PCR儀對PCR過程中相應通道信號進行實時監測和輸出，實現檢測結果的定性分析。
【主要組成成份】
序號 | 組成 | 25頭份/盒 | ||||||
1 | 禽流.感375 μL×1管 | 50 μL×1管 | 75 μL×1管 | 40 μL×1管 | 40 μL×1管 | 1份 | ：10分鐘（min） | 1 |
預變性 | 95℃：5秒（s） | 5 | ||||||
55℃PCR擴增 | 95℃：40秒（s） （此階段結束時采集熒光信號） |
注：ABI系列熒光PCR儀在設置時不選ROX校正，設置淬滅基團選擇None。
【參考值（參考范圍）】
1.試劑盒有效性判定：
（1）陽性對照：有典型S型擴增曲線或Ct值≤35。
（2）陰性對照：Ct值＞38或無Ct值，線形為直線或輕微斜線，無指數增長期。
2.標本結果判定：
（1）陽性：標本檢測結果Ct值≤35或有明顯指數增長期。
（2）可疑：標本檢測結果Ct值在35～38范圍內。此時應對標本進行重復檢測，如重復實驗結果Ct值仍在35～38范圍內，有明顯指數增長期，則判定為陽性，否則為陰性。
（3）陰性：標本檢測結果Ct值＞38或無Ct值。
【檢驗結果的解釋】
通道及檢測結果 | 標本檢測結果解釋 |
FAM | |
+ | 標本中檢出禽流.感病毒RNA |
- | 標本中未檢出禽流.感病毒RNA |
【檢驗方法的局限性】
1. 當檢測樣本中被檢核酸濃度低于本試劑盒的*檢出*可能會發生假陰性的結果。
2. 被檢樣本在采集、運輸、儲存以及處理過程中操作方式不當容易造成RNA降解而產生假陰性結果。
3. 樣本在采集、運輸、儲存以及處理過程中發生交叉污染，則容易得到假陽性結果。
【產品性能指標】 產品的*檢出限為102 Copies/mL，產品CV值≤5%。
【注意事項】
1. 整個檢測過程應嚴格按照本說明書要求分別在試劑準備區、樣本處理區和PCR擴增區進行操作，各區實驗服、儀器、耗材應獨立使用，不能混用；實驗用吸頭采用帶濾芯吸頭；樣本處理區應配有生物安全柜，樣本處理在生物安全柜中進行操作；三個區應該配有紫外線殺菌裝置。
2. 為避免RNA降解，樣本處理過程應在0-4℃條件下操作，且完成實驗后立即上機檢測；樣本處理過程中使用的器具耗材應經過無核酶處理。
3. 每次實驗應該設置陰、陽性對照。
4. 試劑盒所有試劑在使用前應該在常溫下充分融化混勻，并應瞬時離心。
5. 試劑盒內所配陰性和陽性對照在第1次使用前應全部轉移至標本準備區，并單獨存放。
6. 為防止熒光干擾，應避免裸手直接接觸PCR反應管，并應避免在PCR反應管上進行任何標記。
7. 儀器擴增相關參數應按照本說明書相關要求進行設置；不同批號試劑不能混用。
8. ABI系列熒光定量PCR儀參數設置中不選ROX校正，淬滅基因選擇None。
9. 實驗過程中產品的廢棄物應該進行無害化處理后方可丟棄。
